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天麻LAMP鑒定試劑盒免費代測常見問題與解決方法:
陽性對照、待測樣本均無條帶。
1)、PCR反應體系或反應條件不合適。
2)、PCR試劑保存不當失去活性。
3)、引物設計問題。
解決方法:
1)使用梯度PCR摸索PCR反應條件。
2)2× PCR Mix應保存于-20℃,使用時避免反復凍融。若使用頻繁,可在4℃短時間存放。
3)嘗試重新設計引物進行檢查。
陽性對照有目的條帶,待測樣本無條帶或條帶弱。
1、不當儲存或長期儲存引起試劑活性喪失。
2、加入組織裂解液過量。
3、樣本裂解混合液保存不當或保存時間過久,DNA基因組已經(jīng)降解。
4、模板加入量不適合。
5、PCR循環(huán)數(shù)不足。
解決方法:
1、使用新鮮的試劑。
2、增大反應體系,或減少裂解液的用量。
3、裂解混合液液可在4℃保存2-3天,盡量使用新制備的裂解液混合液進行PCR。
4、在反應體系10-20%范圍內(nèi)優(yōu)化模板加入量。反應效性能較差時,可以降模板濃度調(diào)節(jié)到低于10%的范圍。
5、適當增加PCR的循環(huán)數(shù),推薦在35-40循環(huán)為佳。因為模板復雜,一般PCR反應要比用純化的 DNA模板多5-10個循環(huán)為佳。
非特異性擴增
1、PCR退火溫度太低,循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度太高。
2、PCR引物錯配。
3、配制PCR反應體系時溫度太高或配制完成后放置時間太久。
解決方法:
1、增加PCR退火溫度,降低PCR循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度。
2、重新設計PCR引物。
3、PCR反應體系的配制在低溫下進行,配制完成后盡快進行PCR擴增反應。
陰性對照出現(xiàn)目的條帶
1、操作工具或試劑污染。
2、樣本間交叉污染。
解決方法:
1、實驗所有試劑或器材均應高壓滅菌。操作時應小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或濺出離心管外。
陽性對照、待測樣本均無條帶。
1)、PCR反應體系或反應條件不合適。
2)、PCR試劑保存不當失去活性。
3)、引物設計問題。
解決方法:
1)使用梯度PCR摸索PCR反應條件。
2)2× PCR Mix應保存于-20℃,使用時避免反復凍融。若使用頻繁,可在4℃短時間存放。
3)嘗試重新設計引物進行檢查。
陽性對照有目的條帶,待測樣本無條帶或條帶弱。
1、不當儲存或長期儲存引起試劑活性喪失。
2、加入組織裂解液過量。
3、樣本裂解混合液保存不當或保存時間過久,DNA基因組已經(jīng)降解。
4、模板加入量不適合。
5、PCR循環(huán)數(shù)不足。
解決方法:
1、使用新鮮的試劑。
2、增大反應體系,或減少裂解液的用量。
3、裂解混合液液可在4℃保存2-3天,盡量使用新制備的裂解液混合液進行PCR。
4、在反應體系10-20%范圍內(nèi)優(yōu)化模板加入量。反應效性能較差時,可以降模板濃度調(diào)節(jié)到低于10%的范圍。
5、適當增加PCR的循環(huán)數(shù),推薦在35-40循環(huán)為佳。因為模板復雜,一般PCR反應要比用純化的 DNA模板多5-10個循環(huán)為佳。
非特異性擴增
1、PCR退火溫度太低,循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度太高。
2、PCR引物錯配。
3、配制PCR反應體系時溫度太高或配制完成后放置時間太久。
解決方法:
1、增加PCR退火溫度,降低PCR循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度。
2、重新設計PCR引物。
3、PCR反應體系的配制在低溫下進行,配制完成后盡快進行PCR擴增反應。
陰性對照出現(xiàn)目的條帶
1、操作工具或試劑污染。
2、樣本間交叉污染。
解決方法:
1、實驗所有試劑或器材均應高壓滅菌。操作時應小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或濺出離心管外。
2、每個取樣器只對一個樣本使用;或取完一個樣本后,將取樣器刃口浸入2%的次**鈉溶液中,反復涮洗,然后用干凈的紙巾擦干殘液。
詳見說明